Remarques
Diaporama
Plan
1
La mortalité embryonnaire
  • Véronique Boily
  • Sonia Lachapelle


  • 4 octobre 2012
2
Cas clinique
  • Vache de 3 ans et 4 mois, L1
  • EXR à 195 JEL et 39 JDS pour Dx de gestation
    • Résultats:
      • Palpation:
        • Glissement de membranes
        • Moins de liquide qu’attendu dans les cornes utérines
        • Corne gravide petite ≈  3 cm
        • Vésicule petite et molle
      • Écho:
        • Embryon visible, sans cœur fœtal
        • Ségrégation  entre la membrane allantochorionique et l’endomètre
        • Vésicule et embryon petits
    • Correspondant à ≈ 32 JDS
  • Dx provisoire: gestation anormale
    • mortalité embryonnaire tardive
  • Plan d’action: refaire l’EXR dans 1 semaine


3
REX; 7 (45 JDS)
  • Ségrégation  entre la membrane allantochorionique et l’endomètre
4
Historique reproducteur de l’animal
5
Diagnostic différentiel
  • Mortalité embryonnaire tardive (≈ 32 JDS)
  • Mortalité embryonnaire précoce
  • Non fécondation
6
Définition
  • Mortalité embryonnaire: mort du conceptus avant 42 JDS
    • Précoce: 0-16 JDS
      • Pas de retard pour la prochaine chaleur
      • Reconnaissance de la gestation (14-18 JDS)
    • Tardive: 17-42 JDS
      • Dioestrus prolongé

  • Mortalité foetale: mort du conceptus entre 43-280 JDS



    • (Thèse: Guelou, Alfort, 2010)
    • (Inskeep, 2010)
7
Portrait du troupeau
  • 133 vaches
  • Pas d’accès à l’extérieur
  • Troupeau ouvert: achats fréquents
  • IA exclusivement
  • Protocole de vaccination: Bovishield Gold
  • Protocole de synchronisation:
    • PreSynch-OvSynch
8
Portrait du troupeau (suite)
  • Taux de mortalités embryonnaires:
    • Taux moyen rapporté: 5-15%
    • Moyenne au Qc en juin 2012: 7,7 (5.6)%
  • Graphe DSA Alarme AVME:
    • Fluctue entre 0-15%

9
Importance du sujet
  • $ par jour de retard: 4,33$


  • ME précoce: augmentée de 15% en 26 ans










  • Lefebvre, 2010 (CRAAQ).


10
Importance du sujet (suite)
  • Perte en lait (par décallage du prochain pic de lait)
  • Augmente le taux de réforme
  • Fréquent:
    • ME tardive ou MF précoce en moyenne 5-15%
      • Étendue de 7.6 à 21.6%, parfois jusqu’à 40%





  • (Thèse Guelou, Alfort, 2010)
  • (Rapport annuel Juin 2012 DSA@hr)
  • (Inskeep, 2010)
11
Physiopathologie
12
Causes possibles de ME chez les bovins
  • Infectieux:
    • BVD: mais vaccinée avec Bovishield Gold
    • IBR: mais vaccinée avec Bovishield Gold
    • Lepto: ne vont pas à l’extérieur
    • Campylobacter, IBR, Neospora: plutôt à mi-terme
    • Causes reliées à la mère:
    • Production laitière (plus grand métabolisme de P4 chez vaches que nullipares; pic de lait vs 70 JEL)
    • Débalancement hormonal
      • ex. phase lutéale courte lors 1ers cycles PP ou taures
        • → exposition pré-ov à P4 et oestradiol pr éviter PGF prématurée vu réc PGF sur embryon aux stades de morula et blastocyte)
        • Follicule plus petit  → P4 aug moins rapidement post-IA → dév embryon moins rapide → moins grande prod interféron tau
    • Statut cyclique, développement folliculaire (gros follicule trop ou pas assez mature)
    • Environnement utérin: endométrite, rétention placentaire: milieu utérin anormal
    • Dystocie,  jumeaux, mort-né
    • Maladies (autres que touchant le système reproducteur): mammite
  • Causes reliées à l’environnement:
    • Mauvaise exécution de protocole de synchronisation
    • IA à temps fixe avec protocole de synchronisation: amème ovulation de follicules moins matures
    • Alimentation /cote de chair (urée élevée → ↓ pH utérin, acétonémie  → BÉN → ↓ progestérone, zéaralénone)
    • Canicule (↓ d’interféron Tau)
    • IA trop précoce p/r au moment de l’ovulation (ex. 0-6 heures après début de chaleur) ou même en dioestrus
    • Oxytocine pr lait retenu vs ↑ PGF (??)
  • Causes héréditaires
  • Causes reliées à l’embryon: anomalie chromosomique
13
Diagnostic
  • ETR:
    • Diamètre corne et vésicule
    • Fluctuations
    • Glissement de membranes
  • Échographie:
    • Diamètre de la vésicule
    • État des membranes,
    • Quantité de liquide dans les cornes
    • Taille de l’embryon
    • Cœur foetal
  • Dosage de progestérone ou de PAGb:
    • Pas pour Dx de ME
14
Que faire?
  • EXR complet et méthodique
    • Bien noter les observations
    • Importance des confirmations de gestation
  • Si problème de troupeau:
    • Vérifier  l’alimentation
    • S’assurer de l’état de santé générale du troupeau
    • Dépistage pour la santé utérine
    • Implanter des procédures adéquates lors d’introduction d’animaux
    • Chercher des immunotolérants au BVD (sentinelles, réservoir à lait)
    • Éviter d’inséminer avant 60 JEL
    • Optimiser le moment de l’IA
      • 12-18 hres après début de chaleur
15
Que faire cette fois-ci?
  • Injection de deux prostaglandines:
    • Jour de REX
    • 14 jrs plus tard
  • Laisser passer 2 oestrus avant d’inséminer.
16
 
17
Références
  • Breukelman SP & al. Ultrasonographic appearance of the conceptus, fetal heart rate and profiles of pregnancy-associated glycoproteins (PAG) and prostaglandin F2a-metabolite (PGF2a-metabolite) after induction of fetal death with aglepristone stone during early gestation in cattle. Theriogenology 64 (2005) 917–933.
  • Guelou, K. La mortalité embryonnaire chez la vache et l’influence de l’alimentaiton. Thèse pour le doctorat vétérinaire, Alfort. 2010.
  • Hanzen CH & al. La mortalité embryonnaire dans l’espèce bovine: aspects cliniques, étiologiques, pathogéniques et thérapeutiques. Vet Repro No1. Mai 2000.
  • Inskeep, EK & Dailey RA. Maximizing Embryonic and Early Fetal Survival in Dairy Cattle. WCDS Advances in Dairy Technology (2010) Volume 22: 51-69.
  • Lefebvre, RC. La fertilité du cheptel laitier, une question de stratégie. CRAAQ. 28 octobre 2010.
  • Rapport annuel Juin 2012 DSA@hr.




18
Période d’attente volontaire
  • Période entre le vêlage et l’admissibilité à la 1ère saillie
    • IVV recherché de 12 mois
      • Vs gestation de 9 mois
    • En plus, involution microscopique se termine vers 50 JEL chez la vache
19
Dosage hormonaux
  • Plus approprié pour les Dx de gestation que pour ME:
  • Dosage de progestérone: Pr dire non…
    • Vers 21-24 JDS
    • Meilleure spécificité que sensibilité
    • Coûts, délai, besoin de dates précises
    • Si ME: CL peut persister jusqu’à 40 jours de plus: FP
  • Dosage de la PAGb (chorion, DG29, ELISA)
    • Décelable à partir de 28 JDS
    • FN jusqu’à ≈ 90 JDS
    • Baisse graduelle:
      • FP jusqu’à 100 jrs post-vêlage
      • FP jusqu’à 1-2 semaines post-ME
20
"ALC"
  • ALC: cavité allantoïdienne
  • AC: cavité amniotique
  • Sz: chorion
  • UV: vésicule ombilicale
21
Gestation de 45 jrs
  • Diamètre corne gravide: environ 6 cm
  • Diamètre de la vésicule: environ 3.8 cm
  • Longueur du fœtus: environ 3 cm


22
 
23
Interrelations hormonales
  • Fr des pulses de LH modulée par [P4]
    • ↓[P4] → ↑ fr pulses LH
  • Pulses de LH favorise la croissance du FD
  • Donc si P4↓, plus de risque de FD trop mature?
  • FD croît plus vite que les autres car + réc LH
  • FD secrète plus d’oestradiol
  • Donc FD ne peut ovuler tant que CL persiste
  • FSH: pr nouvelle vague folliculaire
  • PGF: lyse CL et embryotoxique durant transition de morula à blastocyte (réc de PGF sur embryon à ces deux stades)
  • Oxytocine → ↑PGF
  • Plus d’œstrogène à la phase de reconn maternelle (jr 14-17) dim les chances de poursuite de gestation
24
Cote de chair inadéquate au vêlage affecte:
  • % de vache en anoestrus
  • TC
  • ME





  • (Inskeep, 2010)
25
Et l’alimentation elle?
  • Vérifier l’urée dans le lait:
    •  ↓ pH utérin → défavorise l’implantation
    • Anormal si
      • ≥ 18 mg/dL pr 1 vache
      • ≥ 14 mg/dL pr troupeau
  • Vérifier si indices d’acétonémie:
    • BHB:
      • BHB ≥ 1.4 mmol/L à 1-15 JEL chez plus de 20% des vaches éligibles
    • Gras/protéines:
      • Si > 1.5: lipomobilisation possible suite à déficit d’énergie
  • Vérifier si mycotoxines dans l’alimentation:
    • Zéaralénone: HPLC sur sérum ou urine


26
 
27
Dx des causes infectieuses:
    • BVD: recherche des immunotolérants
      • Recherche d’IT:
        • Programme d’animaux sentinelles (viro + sérologie)
        • PCR sur lait de réservoir
    • IBR: Séroneutralisation (↑ 4x au sérum pairé)
    • Lepto:
      • Sérologie: agglutination microscopique
      • Autre: Culture bactérienne (conditions spéciales)
    • Campylobacter:
      • Culture bactérienne (conditions spéciales)
        • Sur décharge vaginale
    • Neospora: sérologie

28
Sentinelles pour le dépistage des immunotolérants au BVD
  • Génisses entre 6-12 mois non vaccinées
  • Doivent être exposées aux vaches adultes
    • Pour détecter la présence active du virus
    • Corrélé ++ à présence d’immunotolérant(es)
  • Sérologie sur ≈ 5-10 animaux sentinelles
    • Si positif:
      • virologie sur:
        • tous les individus de moins de 30 mois
        • sur vaches sans descendants testés.
  • Animaux positifs à la viro:
    • isolés du troupeau
    • Refaire viro et séro ds 4 semaines.
      • Pour faire la différence entre immunotolérants et infection active
    • Si la viro négative sans séroconversion
      • faut faire test une 3e fois


  • Éliminer les immunotolérants
  • Pr 9 mois depuis le dernier immunotolérant détecté:
    • tester tous les veaux naissants en viro (dont les boeufs)