1. Préparer le matériel.
2. Introduire la pilule et / ou la gélule dans le lance capsule.
3. Prendre le lance capsule en introduisant le pouce et le majeur dans les anneaux fixes, tandis que l’index sera introduit dans l’anneau amovible.
4. S’approcher de l’animal et saisir le museau entre le bras et les côtes. Il est important de saisir fermement pour que l’animal n’ait aucune chance de vous blesser. Si l’animal bouge trop, celui-ci peut être immobilisé à l’aide d’un licou.
5. Introduire votre main à l’intérieur de la bouche et presser sur le palais pour lui ouvrir la bouche.
6. Du côté opposé, introduire le lance capsule à partir du bord de la joue jusqu’au torus lingual. S’assurer que l’extrémité distale du lance capsule soit caudale au torus.
7. Déclencher le lance capsule et le retirer tout en observant l’animal quelques secondes afin de s’assurer que la pilule est avalée. Si la vache se lèche le museau, c’est un bon indice que l’objectif est atteint.
8. Relâcher l’animal.
9. Laver le lance capsule à l’eau tiède et le désinfecter avec un tampon d’alcool.

1. Préparer et apporter le matériel près de l’animal.
2. Immobiliser l’animal et s’assurer que le cou est droit par rapport à sa colonne vertébrale.
3. Prendre le spéculum de Frick d’une main et, de l’autre, saisir le museau entre votre bras et vos côtes. Il est important d’agripper fermement pour que l’animal n’ait aucune chance de vous blesser.
4. Introduire la main à l’intérieur de la bouche et presser sur le palais dur (l’animal par réflexe commence à mâcher) pour lui ouvrir la bouche.
5. Du côté opposé, introduire le spéculum à partir du bord de la joue jusqu’au torus lingual. S’assurer que l’extrémité distale du spéculum soit caudale au torus.
6. Introduire le tube œsophagien via le spéculum sur une longueur de 1.5 mètre approximativement.
7. Souffler à l’extrémité.
8. Avec l’aide du stéthoscope, une deuxième personne écoute dans la fosse paralombaire gauche pour s’assurer que le tube soit bien dans le rumen. Des gargouillements doivent être entendus.
9. Connecter le tube sur la pompe et pomper le liquide en observant l’animal (fait par la deuxième personne).
10. Retirer le tube en le pliant pour empêcher un reflux de liquide qui pourrait s’infiltrer dans la trachée.
11. Retirer le spéculum et observer l’animal quelques secondes.
12. Relâcher l’animal.
13. Laver à l’eau chaude et ranger le matériel.

L’administration intramusculaire de médicament peut être réalisée principalement à trois endroits chez les bovins : soit la région des muscles gluteus, semitendineux / semi-membraneux et les muscles du cou. Cette dernière région est le site surtout utilisé chez les animaux de boucherie en raison de sa valeur moindre sur le marché de la viande.

Région des gluteus (bovin adulte):

1. De façon imaginaire, tracer un triangle en utilisant ces trois points de base: l’aile de l’illium, l’ischium et le sacrum. Au centre de ce triangle se trouve le site d’injection.
2. Nettoyer le site avec un tampon d’alcool.
3. Préparer la seringue
4. Se placer à l’arrière de l’animal en diagonal au site d’injection ou complètement de l’autre côté du site si vous êtes assez grand.
5. Insérer seulement l’aiguille, d’abord en ayant préalablement frappé deux ou trois coups avec la paume de la main afin de désensibiliser le site. Au moment de piquer, l’animal bougera quelque peu ou donnera quelques ruades du côté de l’injection, alors prenez garde.
6. Visser la seringue sur l’aiguille.
7. S’assurer que l’aiguille est dans un muscle en retirant légèrement sur le piston. Une pression négative indiquera que vous êtes au bon endroit. Si vous obtenez du sang, changer l’orientation de l’aiguille
8. Injecter le médicament, un maximum de 20 ml par site pour un animal adulte. Si le volume total excède 20 ml, utiliser un deuxième site.
9. Retirer la seringue et l’aiguille, maintenir une pression tout en massant le site d’injection.
10. Jeter la seringue et l’aiguille dans les contenants identifiés à cette fin.
    
    

Région des semitendineux et semimembraneux:

1. Préparer la seringue et l’aiguille.
2. Nettoyer le site avec un tampon d’alcool.
3. D’une main, lever la queue à ~90º en la tenant près de la base. Se tenir du coté opposé au site d’injection pour éviter les ruades. De l’autre main, frapper deux ou trois coups et insérer votre aiguille perpendiculairement. S’assurer que vous êtes dans le muscle en retirant légèrement le piston, une pression négative indiquera que vous êtes au bon endroit.
4. Injecter le médicament, un maximum de 20 ml par site pour un animal adulte. Si le volume total excède 20 ml, utiliser un deuxième site.
5. Retirer la seringue et l’aiguille et faire une pression tout en massant le site d’injection.
6. Relâcher la queue.
   
   

Région du cou:

1. Faire un triangle imaginaire en se servant comme lignes de base : la colonne cervicale, le ligament du cou et la partie craniale de la scapula. Au centre de ce triangle, se trouve le site d’injection.
2. Nettoyer le site avec un tampon d’alcool.
3. Préparer la seringue.
4. Avec seulement l’aiguille, piquer perpendiculairement au site d’injection en ayant préalablement frappé deux ou trois coups avec la paume de la main afin de désensibiliser le site. Au moment de piquer, l’animal bougera quelque peu, alors prenez garde.
5. Visser la seringue sur l’aiguille.
6. S’assurer que l’aiguille est dans le muscle en retirant légèrement sur le piston. Une pression négative indiquera que vous êtes au bon endroit.
7. Injecter le médicament, un maximum de 20 ml par site pour un animal adulte. Si le volume total excède 20 ml, utiliser un deuxième site.
8. Retirer la seringue et l’aiguille et faire une pression tout en massant le site d’injection.
9. Jeter la seringue et l’aiguille dans les contenants identifiés à cette fin.

L’important pour les injections intramusculaires est d’avoir une bonne contention sur l’animal pour éviter les accidents. Une bonne évaluation de l’animal et de l’environnement vous permettra d’avoir une meilleure contention.

1. Rassembler et préparer le matériel.
2. Identifier chaque tube avec le numéro de pathologie ou avec le numéro de dossier de l’animal. La date du prélèvement doit aussi être inscrite.
3. Immobiliser l’animal.
4. Avec une main, agripper la queue près de la base. La lever à ~80º.
5. Avec l’autre main, désinfecter le site à l’aide d’un tampon d’alcool. Le site de prélèvement se situe sur la partie ventrale de la queue entre la base et la fin du premier tiers. Soit entre la première et la huitième vertèbre coccygienne.
6. Prendre le support à tube (préassemblé) entre l’index et le majeur tout en tenant également le tube à l’intérieur du support à l’aide de la paume de votre main. Il est important de ne pas presser le tube sur l’aiguille avant que l’autre extrémité (côté site) soit enfonçée à l’intérieur de la queue, car le tube perdrait sa pression négative et deviendrait inefficace.
7. Placer votre pouce sur le site et palper la dépression qui se trouve sur la partie ventrale des vertèbres. Le site se trouve au centre de cette dépression.
8. Piquer perpendiculairement au centre de la dépression. Enfonçer l’aiguille jusqu’à la sensation d’avoir buté contre l’os.
9. Presser le tube avec la paume de votre main afin que le bouchon soit transpercé par l’aiguille. Si le sang ne vient pas, il suffit de retirer légèrement l’aiguille de l’intérieur de la queue. Le sang arrêtera de couler lorsqu’il n’y aura plus de pression dans le tube. Chaque type de tube à une quantité prédéterminée de pression négative.
10. Retirer le tube. S’il contient de l’anticoagulant, il faut l’agiter délicatement en l’inversant à 2 ou 3 reprises.
11. Retirer l’aiguille du site et faire une pression à l’endroit de la ponction pour éviter les hématomes.
12. Relâcher la queue et l’animal s’il y a lieu.
13. Remplir le formulaire d’analyse et le soumettre avec le tube au laboratoire.
14. Jeter les aiguilles et les tubes souillés aux endroits appropriés.

1. Immobiliser l’animal.
2. Mettre un licou et / ou une mouchette et bien fixer la tête contre un barreau ou une poutre.
3. Installer le simplex sur la bouteille.
4. Faire gonfler la veine en faisant un garrot à la base du cou, dans la gouttière jugulaire.
5. Donner des petites tapes sur la veine pour bien la stimuler et ainsi mieux la visualiser. Il est très important de bien visualiser la veine avant de commencer les manipulations.
6. Nettoyer le site avec le tampon d’alcool.
7. Toujours en tenant le garrot, insérer l’aiguille perpendiculairement à la veine en donnant un bon coup sec et rapide. Lorsque le sang gicle, réorienter et insérer l’aiguille parallèlement à la veine.
8. Observer si le sang coule toujours.
9. Relâcher le garrot.
10. Fixer le simplex et la bouteille à l’aiguille. Observer l’animal et le site pendant l’administration.
11. Une fois le produit administré, retirer l’aiguille et garder une pression sur le site pendant un moment.
12. Relâcher l’animal.

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